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人登革熱抗體(DF-Ab)免疫組化試劑盒,該試劑盒以 HRP 標記的鏈霉親和素復合物為基礎,可用于檢測細胞、組織內的特異性指標抗原。該試劑盒具有靈敏度高、特異性強、定性定位準確、背景清晰。在所用的 TPA 一抗與相應靶抗原結合后,用生物化二抗與一抗特異性結合,Z后加入 HRP-SA,顯微鏡下觀察成像。歡迎新老客戶前來咨詢訂購。
人登革熱抗體(DF-Ab)免疫組化試劑盒,組織塊取材不能太大過厚,才能較好地完成脫水的過程。如果取材太厚,在較短的時間內脫水不*,將可引起一系列的問題,比如浸蠟不*,切片不好完成,切不完整。由于先天不足,導致后來切片染色的脫落,造成染色的失敗,或者由此反復操作,造成人力物力的浪費,造成病理報告的延期發出等。因此,對取材的要求是除了要求要有藝術性外,即平整、外觀好看,還要求適中。
規格:50T/100T
存儲:-20℃
運輸:干冰+冰袋運輸
人登革熱抗體(DF-Ab)免疫組化試劑盒,應用于免疫組織化學染色的切片,對切片的質量要求較高,切片必須完整,平展、無汽泡,無鄒折,這樣有利在染色時的沖洗,有利于切片的牢固附貼。如果切片不平展,免疫組化染色后,可出現染色不均勻的現象,顏色深淺不一, 不平。如果切片有汽泡切片在烘烤時,由于汽泡的破裂影響了汽泡周圍的組織,在其周圍可觀察到深淺不一的染色。如果切片有鄒折,免疫組化染色后,在鄒折的地方有深淺不一的顏色,這是一種假陽性,容易引走混淆。應用于免疫組化染色的切片。由于整個過程需經幾個階段的處理,如抗原修復時抗原修復液的沸騰且需持續十幾分鐘,PBS的反復沖洗,有的甚至于4℃冰箱中孵育達十幾小時。因此,對切片的質量要求很高,尤其是切片的附貼程度。以往有人主張切片在60℃以下烘烤30-60分鐘即可按此進行結果是切片掉片嚴重,切片松動率占*。切片究竟烘烤多長時間才合適,既不脫片和適合各項要求,又不至于破壞抗原。幾組實驗[]診斷P173認為,切片在60℃的恒溫干燥箱中烘烤2-5小時zui為合適。這是因為:抗原可耐受如此的溫度,病理科一般使用的石蠟,其熔點在60℃左右,組織浸蠟時,浸蠟箱中的溫度,一般都調在65℃左右,組織在這樣溫度中要浸泡2小時以上,才能達到*地浸蠟。組織中的抗原已經受了65℃的溫度考驗,保存下來的抗原,都已具有耐熱性。另外,經上述時間烘烤出來的切片,附貼牢固,抗原保存好,染色成功率達*,保證了病理診斷的及時性和準確性。
特需要注意的是,不管是應用于診斷的切片還是研究用的切片,烘烤后應盡快進行染色。如果切片切完后,遲遲不進行染色,存放于室溫中或工作冰箱中,切片中的抗原將會隨著時間的延長而逐漸消失,甚至出現假陰性。原則上是新鮮切片,即行染色,染多少張切多少張,這樣才能盡可能的保存表達更多的抗原。
人登革熱抗體(DF-Ab)免疫組化試劑盒,PBS的沖洗:
免疫組化的染色過程,除了前面的處理和加入的抗體外,都在PBS的沖沖洗洗中度過,PBS沖洗的正確與否,也是導致zui后結果的關鍵。
1.單獨沖洗,防止交叉反應造成污染。
臨床上每天檢測的病例很多,所用的抗體種類及項目也多,如果在加入一抗孵育完后,將它們在一個缸內洗,這樣就會造成交叉污染,影響zui后的結果。正確的做法是單獨地進行沖洗,沖洗的PBS為一次性,保證切片沒有相互交叉污染的機會。
2.溫柔沖洗,防止切片的脫落。
沖洗切片,取出切片,將PBS從上輕輕地沖洗,讓PBS自上而下流下來,不要拿起切片將PBS對準切片沖洗,這樣由于沖出的PBS有一定的沖擊力,很容易使切片周邊引起松動,導致切片的脫落。
3.沖洗的時間要足夠,才能*洗去結合的物質。
沖洗切片有人提出用微振蕩器振染,振下未結合的各種物,使之不產生背景,此種做法一是浪費時間,二是很容易導致切片的脫落。切片的沖洗據實踐認為,用一小燒杯柔和地于切片上沖洗,就能*沖洗去未結合的物質,無需附加其它條件,沖洗好于切片上再注入PBS,持續2分鐘左右就*足夠了。
4.PBS的PH和離子強度的使用和要求。
劉彥仿指出:中性及弱鹼性條件(PH7-8)有利于免疫復合物的形成,而酸性條件則有利于分解;低離子強度有利于免疫復合物的形成,而高離子強度則有利于分解。免疫組化P56我們目前常用的PBS的PH在7.4-7.6濃度是0.01M,根據本室十幾年來的使用情況,認為該溶液價格便宜配制方面,使用效果好。
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