間隙連接是由連接蛋白構成的專門的細胞間膜通道，可選擇性促進<1.5 kD的小分子通過細胞。它們受電壓，生長因子，cAMP的緊密調節，并且受磷酸化調節。Cell Meter™熒光細胞間隙連接檢測試劑盒為體外測定間隙連接功能提供了可靠而強大的檢測方法。該方法是非侵入性的。對研究中的細胞群進行劃分，以使其中一小部分載有親脂性細胞質膜可滲透染料Calcein UltraGreen™AM，當細胞質酯酶吸收細胞時，該染料會水解，從而生成Calcein UltraGreen（一種高度熒光且保留良好的膜） -不可滲透的分子。另一部分是DiD，它是一種親脂性膜染料，在摻入膜時會橫向擴散，使整個細胞膜染成深紅色熒光。將兩個部分混合并在共培養條件下孵育。鈣黃綠素UltraGreen通過間隙連接轉移到DiD染色的細胞中。可以通過熒光成像或流式細胞術檢測。百螢生物為您提供優質的Cell Meter™熒光細胞間隙連接檢測試劑盒。
適用儀器
| 流式細胞儀 | |
| 激發： | 488 nm and 640 nm激光 |
| 發射： | 530/30 nm and 660/20 nm濾波片 |
| 通道： | FITC和APC通道 |
| 熒光顯微鏡 | |
| 激發： | FITC和Cy5濾波片組 |
| 發射： | FITC和Cy5濾波片組 |
| 推薦孔板： | 黑色透明 |
樣品分析方案
概述
將鈣黃綠素Ultragreen AM工作溶液添加到細胞中
將DiD工作溶液添加到細胞中
在37°C下孵育10-30分鐘
用GAP連接檢測緩沖液洗滌細胞
將細胞重懸于細胞培養基中并按1：1比例混合
使用帶有530/30 nm和660/20 nm發射濾光片的流式細胞儀或帶有FITC和Cy5濾光片組的熒光顯微鏡在不同時間檢測熒光信號
儲備溶液配制
注意：將未使用的Calcein Ultragreen AM儲備溶液分裝在-20°C下，一次性使用，以免凍融循環。
注意：一個樣品瓶足以進行50次測試。
注意：將未使用的DiD儲備溶液分裝在-20°C下，以單次使用，以免凍融循環。
注意：不宜儲存Calcein Ultragreen AM工作溶液，應立即使用。
注意：1 mL Calcein Ultragreen AM工作溶液足以進行兩次測試。
注意：DiD工作溶液不宜存儲，應立即使用。
注意：1 mL DiD工作溶液足以進行兩次測試。
操作步驟
在6孔細胞培養板的細胞培養基中培養細胞。
除去細胞培養基，并加入0.5 mL鈣黃綠素Ultragreen AM工作溶液。
在37°C下孵育細胞10-20分鐘。
注意：應為每個細胞系優化孵育時間。除去染料工作溶液，并用GAP連接分析緩沖液洗滌細胞。
注意：對于貼壁細胞，請使用細胞橡膠刮板將細胞從板上分離下來。在細胞培養基中重懸細胞。
在6孔細胞培養板的細胞培養基中培養細胞。
除去細胞培養基，并加入0.5 mL DiD工作溶液。
在37°C下孵育細胞10-20分鐘。
注意：應為每個細胞系優化孵育時間。除去染料工作溶液，并用GAP連接分析緩沖液洗滌細胞。
注意：對于貼壁細胞，請使用細胞橡膠刮板將細胞從板上分離下來。在細胞培養基中重懸細胞。
將鈣黃綠素染色的細胞和DiD標記的細胞以1：1的比例混合，并鋪在孔中。
注意：對于熒光顯微鏡，將每個50 µL加到96孔板的孔中并混合均勻。
注意：對于流式細胞儀，將每一種加入500 µL到6孔板的孔中并混合均勻。在37°C下孵育細胞2-3小時。
使用FITC和Cy5濾光片組通過熒光顯微鏡檢測細胞。
對于流式細胞儀分析：對于貼壁細胞，使用細胞橡膠刮板分離細胞。一旦細胞處于懸浮狀態或對于懸浮細胞，請用DPBS或您選擇的緩沖液洗滌細胞兩次。將細胞重懸于HHBS（#20011）或DPBS或您選擇的緩沖液中，并使用530/30 nm濾光片（FITC通道）和660/20 nm濾光片（APC通道）檢測。
