1．準備工作
應用抗體柱對各種蛋白質進行親和純化的zui主要特點是在足夠溫和的條件廠就能將抗原從柱上洗脫下來，并能保持蛋白質的結構和／或功能不改變。連接抗原和抗體的結合鍵的類型和數量是決定洗脫難易的關鍵。在制備大規模層析柱用于純化之前，有必要對所有可利用的抗體進行測試，并從中選擇適當的抗體制備親和層析柱。
建議不應將抗體流經含有微珠的層析柱，因為這樣會使抗體形成·個濃度梯度，從析柱1：而的濃度高，而下面的濃度低。為避免這種情況，應將抗體與微珠混合成泥漿狀而使其結合。
2．所需的溶液、試劑和特殊設備
抗體；蛋白A或蛋白G微珠；0．2mol／ml硼酸鈉（pH9．0）；二甲基庚二酸（DMP）；PBS；0．2mol／L乙醇胺（pH8．0）；考馬斯亮藍；Laemmli樣品緩沖液；搖床。
3。操作步驟
（1）將抗體與蛋白A或蛋白G微珠結合，一般使用的層析柱，每毫升濕的微珠大約可結合2mg的抗體。將抗體與蛋白A／G微珠混合，使其成為一種稀薄的漿狀。在10ml溶液總量中大約含lml微珠。輕輕振蕩混勻，室溫孵育1h。
如前所述，免疫親和層析柱一般用單抗或經過親和純化的多抗制備。可以用不同來源的抗體，包括雜交瘤細胞培養上清液、腹水或純化的抗體溶液， 由于與蛋白A／G微珠結合，可作為去除貯存緩沖液或交換緩沖液中其他物質的步驟。
如果需知道與微珠結合抗體的準確濃度，在與微珠結合之前應對抗體進行純化。
（2）用10倍體積的0．2mol／L硼酸鈉緩沖液（pH9．0）洗滌微珠2次，以3000g離心5min，或10 000g離心30s。
（3）用10倍體積的0．2mol／L硼酸鈉（pH9．0）重懸微珠，并取出相當于10u1微珠的混懸液。加足量的DMP（固體）至終濃度為20retool／L。
如用DMP交聯，應為pH 8．3以上。
（4）輕輕混勻，室溫孵育30min，取出相當于10txl已偶聯的微珠。
（5）用0．2mol／L乙醇胺洗滌微珠1次，以終止反應。然后用0．2mol／L懸微珠，室溫孵育2h，輕輕混勻。
（6）再次洗滌后，用含0．01％硫柳汞的PBS重懸微珠。
（7）檢測微珠樣品與抗體結合前后的結合效率，將樣品分別加入Laemmli樣品緩沖液中煮沸。分別取出相當于1／Il和9btl的兩種樣品，在10％SDS-聚丙烯酰胺凝膠中進行電泳，用考馬斯亮藍染色。結合前樣品呈現重鏈區帶（分子質量為55kDa）而結合后樣品則無，表明交連成功
親和層析柱在含硫柳汞緩沖液中置4C可保存1年以上。制備好的微珠即可用于抗原的免疫親和純化。
 

凝膠結合效率