MycoLight 流式細胞計數活細菌檢測試劑盒是美國AAT Bioquest生產的用于檢測細菌的試劑盒，MycoLight流式細胞術活菌分析試劑盒提供了一種簡便的方法，可根據細胞內酯酶活性評估細菌活力。 MycoLight™520是一種非熒光酯酶底物，可擴散到革蘭氏陽性菌和革蘭氏陰性菌中。 通過細菌細胞內非特異性酯酶水解后，會產生綠色熒光產物，并在細菌內積累。 與常用的酯酶底物CFDA和CFDA-AM相比，該試劑盒可提供更明亮，更穩定的信號，具有更低的背景和更容易的染色方案。百螢生物是AAT Bioquest的中國代理商，為您提供優質的MycoLight 流式細胞計數活細菌檢測試劑盒。
適用儀器
| 熒光顯微鏡 | |
| Ex: | 488 nm |
| Em： | 530/30 nm |
| 通道: | FITC 通道 |
樣品實驗方案
簡要概述
1.準備100X染料儲備溶液。
2.準備細菌樣品。
3.將細菌樣品與MycoLight 520在黑暗中于37°C孵育5-10分鐘或在室溫下孵育60分鐘。
4.通過帶有FITC通道的流式細胞儀分析樣品。
溶液配制
1.儲備溶液配制
所有未使用的儲備溶液應分為一次性使用的等分試樣，并在制備后儲存在-20°C下。 避免重復凍融循環。
1.1MycoLight 520儲備液（100X）：
將100 µL DMSO（組分C）加入一小瓶MycoLight 520（組分A）中，制成100X儲備液。
樣品示例及操作
1.準備細菌樣品，濃度范圍為106到108個細胞/ ml。在適當的培養基中使細菌生長到對數后期。通過以10,000 x g離心10分鐘除去培養基，然后將沉淀重新懸浮在測定緩沖液（組分B）中。注意：在波長= 600 nm（OD600）處測量細菌培養物的光密度，以確定細胞數。對于大腸桿菌培養，OD600 = 1.0等于8 x 108細胞/ ml。
2.根據需要用測試化合物處理細胞。通過以10,000 x g離心10分鐘來去除處理液，然后將沉淀物重新懸浮在適量的測定緩沖液（組分B）中，以使處理后樣品中的細菌濃度與活菌濃度相同。注意：開始治療之前，請確定細菌培養物的濃度。注意：死細菌可以作為陰性對照，建議使用70％乙醇殺死細菌30分鐘，然后煮沸60分鐘。
3.活/死細菌混合物制備示例：混合7種不同比例的細菌懸液，如表1所示，每個樣品的總體積為200 µL。
4.將2 µL 100X MycoLight 520儲備液加到200 µL Assay Buffer中的細菌樣品中。
5.充分混合并在黑暗中于37°C孵育5-10分鐘，或在室溫孵育60分鐘，以獲得染色效果。
6.在使用流式細胞儀分析細胞之前，添加300 µL分析緩沖液（組分C）以增加體積。
7.用流式細胞儀通過FITC通道（488/530 nm）監測細菌的熒光。注意：要排除雜物，建議將流式細胞儀的閾值設置為以下值：FSC> 10,000，SSC> 5,000。注意：MycoLight 520的效率高度依賴菌株，因此應相應優化染色條件。
表1.混合以達到各種活/死比的活樣本和死樣本的示例體積
| 活細胞比例 | 樣品死亡µL | 活樣品µL |
| 0:100 | 0 | 200 |
| 10:90 | 20 | 180 |
| 30:70 | 60 | 140 |
| 50:50 | 100 | 100 |
| 90:10 | 180 | 20 |
| 100:0 | 200 | 0 |
